简介： 

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。阿利新蓝(又称阿尔辛蓝、爱先蓝等)和PAS技术联合使用可鉴别同一组织切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。AB-PAS染色液核心成分为阿利新蓝染色液和Schiff Reagent，多用于黏液物质染色，糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白呈紫红色，其余呈蓝色。  

组成：  

操作步骤(仅供参考)：
1、 脱蜡至水，蒸馏水洗
2、 入阿利新蓝染色液染色。 
3、 蒸馏水洗3次。  
4、入过碘酸溶液氧化5min。
5、入Schiff Reagent浸染。
6、倾去Schiff Reagent，流水冲洗。 
7、(可选)入Leagene苏木素染色液染核。
8、用酸性分化液分化，水洗。
9、用Scott蓝化液返蓝，水洗。
10、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。

染色结果：

 

备注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色至紫色。  

注意事项：  

1、 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。  

2、 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。  

3、 阿利新蓝染色液、过碘酸溶液、Schiff Reagent均应置于4℃密闭保存。  

4、 酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新 旧而定。  

5、 切片在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类 别等决定。  

6、 用苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆 或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。