糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） G1280
产品名称：糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） Jinpan
产品型号：G1280
产品特点：G1280 糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） Jinpan规格：50ml*2/100ml*2保存：2-8℃
G1280糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） Jinpan的详细资料：
G1280 糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） Jinpan
规格：50ml*2/100ml*2
保存：2-8℃
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。
Jinpan染色液核心成分为阿利新蓝染色液，多用于黏液物质染色，糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白呈紫红色，其余呈蓝色。
操作步骤(仅供参考)：
1、脱蜡水，蒸馏水洗。
3、入阿利新蓝染色液染色。
4、蒸馏水洗。
5、入过碘酸溶液氧化。
6、入Schiff Reagent浸染。
7、倾去Schiff Reagent，流水冲洗。
8、(可选)入Jinpan苏木素染色液。
9、分化，水洗。
10、返蓝，水洗3min。
11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。
染色结果：
| 糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白 | 紫红色 |
| 酸性黏蛋白(硫黏蛋白和唾液黏蛋白) | 蓝色 |
| 蛋白多糖和透明质酸 | 蓝色 |
备注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色紫色。
注意事项：
1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃佳。
3、酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
4、用Jinpan苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。
5、阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响终结果。PAS技术在阿尔辛蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色。与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。
6、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
有效期：6个月有效。
相关文献：
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注意事项：
1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃佳。
3、酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
4、用Jinpan苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。
5、阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响终结果。PAS技术在阿尔辛蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色。与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。
6、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
注意事项：
1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃佳。
3、酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
4、用Jinpan苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。
5、阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响终结果。PAS技术在阿尔辛蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色。与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。
6、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
G1280 糖原PAS（过碘酸-雪夫染色液） Jinpan